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D-生物-素-瓊脂糖

D-生物-素-瓊脂糖
Biotin NUPharose FF 是一種將D-生物-素鍵合在NUPharose瓊脂糖基球上形成的親和層析分離介質。該介質中的生物-素配基能高度特異性結合親和素、鏈霉親和素,親和力非常高,可用于親和素、鏈霉親和素及其偶聯物的固定化,固定化后的產品可應用于診斷檢測,蛋白純化等。也可直接用于削弱親和力的親和素、鏈霉親和素突變體的純化。

  • 產品型號:
  • 廠商性質:生產廠家
  • 更新時間:2024-10-13
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詳細介紹

D-生物-素-瓊脂糖

、產品介紹

Biotin NUPharose FF 是一種將D-生物-素鍵合在NUPharose瓊脂糖基球上形成的親和層析分離介質。該介質中的生物-素配基能高度特異性結合親和素、鏈霉親和素,親和力非常高,可用于親和素、鏈霉親和素及其偶聯物的固定化,固定化后的產品可應用于診斷檢測,蛋白純化等。也可直接用于削弱親和力的親和素、鏈霉親和素突變體的純化。

、產品特點與技術指標

產品名稱

D-生物-素-瓊脂糖

基質

6%交聯瓊脂糖

配基

D-生物-素, 5 μmol/mL

粒徑范圍 a

45~ 165 μm

平均粒徑

~90 μm

動態結合載量 b

~30 mg 鏈霉親和素突變體/mL 介質

推薦工作流速

60~ 150 cm/h

最大流速與壓力

>900 cm/h 0.3 MPa

使用 pH

3~ 12(推薦的工作 pH),3~ 13CIP 清洗)

化學穩定性

在以下溶液中穩定:常用的水相緩沖液、0. mol/L NaOH mol/L 尿素、 2%吐溫 20 等。

儲存與運輸

20%乙醇,2~8 ℃(儲存),2~30 ℃(運輸)

注:a90%體積以上的微球在此粒徑范圍;bDBC10%測試條件為:10%流穿,6 min 停留時間。

、生物-素填料親和原

Biotin NUPharose FF填料是在NUPharose 瓊脂糖凝膠微球骨架上修飾D-生物-素而成(圖1a)。D-生物-素與鏈霉親和素之間的親和力非常高,其解離常數在10?14mol/L數量級,是自然界最-強的非共價相互作用之一。

本產品特異性結合鏈霉親和素后非常穩定,只有在苛刻的條件下,例如 2%SDS的變性條件才能將鏈霉親和素解離。因此Biotin NUPharose FF適用于親和素、鏈霉親和素及其偶聯物的固定化,固定化后的產品可應用于診斷檢測、蛋白純化等。

另外一方面,一些鏈霉親和素的突變體與D-生物-素之間的親和力大幅減弱,使得突變體與D-生物-素的特異性結合是可逆的(圖1c),因而可以用Biotin NUPharose FF來純化鏈霉親和素突變體(圖2)。

D-生物-素-瓊脂糖 

、使用方法參考 

4.1  色譜柱裝填以下闡述與層析系統連接時,填料的色譜柱裝填方法。

1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體最好做脫氣處理。

2)填料用量計算:通過沉降定量填料體積,需要的沉降填料體積=柱體積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩定體積。Biotin NUPharose FF 的壓縮比為1.15 。為使達到裝柱比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。

3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻后量取相應體積,抽濾除去液體,并用約3倍填料體積的純化水洗滌,重復3次,以除去保存液。

4)裝柱填料懸液準備:將填料轉移到適當的容器中,加入適量的裝柱液,制成50~75 v%的裝柱填料懸液,使用前攪勻。

5)裝填前準備:在清洗干凈的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下端的空氣,在柱內保留少量的蒸餾水,擰緊下堵頭,調整柱子使其垂直于地面。

6)裝填:將攪勻后的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(必要時使用裝柱器),為避免引入氣泡,應使之沿層析柱內壁自然流下。將所有填料加入后,用裝柱液將裝柱器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與層析系統連接。

7)壓柱:使柱內填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉 降完-全后(填料與液體的界面清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,并將柱頭下降至界面處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3 MPa),繼續壓柱至界面清晰穩定,標記界面穩定時的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關閉柱底的閥門/堵頭,下壓柱頭至標記位置下方與壓縮比對應的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成后,需用高流速平衡柱內的填料。

 

裝柱條件

Biotin NUPharose FF

壓縮比

1.15

裝柱流速

600 cm/h

 

4.2  柱效測定和評價

完成裝柱后、使用前可通過柱效測定和評價可以確認層析柱裝填質量。柱效通常用理論塔板高度(HETP)和非對稱因子(As)來評價。

 

4.3  推薦緩沖液

推薦用以下緩沖液結合鏈霉親和素或者純化鏈霉親和素突變體。

結合緩沖液:20 mM Tris-HCl150 mM NaCl1 mM EDTApH8.0

洗脫緩沖液:結合緩沖液+10~50 mM D-生物-素再生緩沖液:0.1 M NaOH

 

4.4 樣品純化

1)平衡:再用結合緩沖液平衡5個柱體積,建議流速為100~150 cm/h

2)上樣:將準備好的樣品上柱,建議流速為20~ 00cm/h ,可根據實際結合情況選擇流速,能獲得較好的效果。上柱的樣品應盡量保持與結合緩沖液一致。通常可用透析、超濾、稀釋等方法處理樣品。并且上柱前應過 0.45μm 濾膜或高速離心去除 不溶物。

3)再平衡:上樣后用結合緩沖液平衡5~10個柱體積,或平衡至基線,洗去 雜質,推薦流速為100~150 cm/h

4)洗脫:用洗脫緩沖液洗6~10個柱體積,建議流速為100~150 cm/h,根據需要置換緩沖液。

5NaOH再生:洗脫目的蛋白后的柱子用純水清洗3-5個柱體積,并用0.1 M NaOH 再生 3-5 個柱體積,再用純水清洗至中性,用 20%乙醇保存柱子,或用結合緩沖液平衡后進行下一次純化,建議流速為100~150 cm/h

 

4.5 填料保存

填料的初始保存液為20%乙醇,使用過后可繼續用20%乙醇保存。保存溫度在2~8 ℃為宜,不可凍存。

 


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